在細胞培養、生物制藥與臨床診斷領域,支原體污染是威脅產品質量與實驗結果的原因。支原體高靈敏度試劑盒憑借PCR或酶聯免疫等技術,可檢測低濃度的支原體DNA或抗原。其檢測結果的準確性高度依賴于規范的操作流程。掌握
支原體高靈敏度試劑盒的標準使用方法,是確保警報真實可靠的關鍵。

第一步:環境準備與試劑預處理
在獨立的潔凈區(如生物安全柜)進行操作,避免交叉污染。將試劑盒從-20℃冰箱取出,室溫(15-25℃)平衡15-30分鐘。檢查各組分是否齊全、無破損、無污染。嚴禁反復凍融試劑,使用后立即放回低溫保存。準備好無菌離心管、移液器及濾芯吸頭。
第二步:樣本采集與處理
細胞培養液:取1-5mL上清液,4℃10,000×g離心5-10分鐘,棄沉淀,取上清用于檢測;
血清/生物制品:直接取樣或按比例稀釋;
組織樣本:勻漿后離心取上清。
所有操作需無菌進行,防止外源DNA/RNA污染。樣本應新鮮或-80℃保存,避免反復凍融。
第三步:反應體系配制
根據說明書計算所需反應液總量(陰性對照、陽性對照、待測樣本)。在冰上解凍引物、探針、酶混合液。使用單通道或多通道移液器,按順序加入緩沖液、酶、引物等,輕輕混勻,短暫離心去除氣泡。每批次必須包含陰性與陽性對照,以驗證實驗有效性。
第四步:加樣與擴增/孵育
將配制好的反應液分裝至PCR管或微孔板。依次加入處理后的樣本、陰性對照、陽性對照(各10-20μL),蓋緊管蓋或封板膜。放入實時熒光PCR儀或酶標儀,設置正確的程序:
PCR法:預變性→40個循環(變性-退火-延伸)→熔解曲線分析;
ELISA法:37℃孵育30-60分鐘→洗板→加酶標抗體→再孵育→顯色→終止。嚴格控制溫度與時間。
第五步:結果判讀與記錄
PCR法:觀察擴增曲線是否呈“S”型,Ct值是否在有效范圍。陽性樣本Ct≤35且熔解曲線峰形正確;陰性對照無擴增;陽性對照有擴增。
ELISA法:用酶標儀讀取OD值,計算樣本與臨界值(CO)的比值(S/CO)。S/CO≥1.0判為陽性。
記錄所有數據,保存原始圖譜或OD值表格,建立檢測檔案。